4. Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения. Контроль предстерилизационной очистки


6. Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения

6.1. Контроль качества предстерилизационной очистки проводят специалисты территориальных санитарно-эпидемиологических учреждений в зависимости от эпидзначимости медучреждения и конкретной эпидситуации.

Самоконтроль в ЛПУ проводят: в централизованных стерилизационных (ЦС) ежедневно, в отделениях - не реже 1 раза в неделю; организует и контролирует его старшая медицинская сестра (акушерка) отделения, главная медсестра - 1 раз в месяц.

6.2. Контролю подлежит: в ЦС - 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену, в отделениях - 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее 3-х единиц.

6.3. Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки азопирамовой пробы (на наличие остаточных количеств крови).

Методика приготовления реактивов для постановки пробы.

6.3.1. Азопирамовая проба.

6.3.1.1. Приготовление исходного раствора. Для приготовления 1 л (дм3) исходно го раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина и 1,0-1,5 г солянокислого анилина, смешивают их в сухой мерной посуде и доводят до объема 1 л (дм ) 95% этиловым спиртом. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.

Исходный раствор азопирама следует хранить в плотно закрытом флаконе в темноте. Допустимый срок хранения исходного раствора азопирама составляет, при температуре 4оС (в холодильнике) - 2 месяца; при комнатной температуре (20±2°С) - не более 1 месяца. Умеренное пожелтение исходного раствора без выпадения осадка в процессе хранения не снижает рабочих свойств раствора.

6.3.1.2. Приготовление реактива азопирам. Перед постановкой пробы готовят ре актив азопирам, смешивая равные объемные количества исходного раствора азопирама и 3% раствора перекиси водорода.

Реактив азопирам можно хранить не более 2 часов. При более длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше +25°С раствор розовеет быстрее, поэтому его необходимо использовать в течение 30-40 мин. Не следует подвергать проверке горячие инструменты, а также хранить реактив азопирам на ярком свету и вблизи нагревательных приборов.

В случае необходимости пригодность реактива азопирам проверяют следующим образом: 2-3 капли реактива наносят на пятно крови. Если не позже, чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению, если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться не следует.

Методика постановки пробы.

Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом, или наносят 2-3 капли реактива на изделие с помощью пипетки.

В шприцы вносят 3-4 капли рабочего раствора реактива и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь, реактив оставляют в шприце на 1 мин, а затем вытесняют на марлевую салфетку. При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц Последовательно меняя иглы, через них пропускают реактив, вытесняя 3-4 капли на марлевую салфетку.

Качество очистки катетеров и других полых изделий оценивают путем введения реактива внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия на 1 мин, после чего сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от его величины.

studfiles.net

Контроль качества предстерилизационной очистки

1. Амидопириновая проба: смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина с 3% раствором перекиси водорода и добавляют несколько капель 30% уксусной кислоты. В присутствии крови появляется сине-фиолетовое окрашивание.

2. Азопирамовая проба. Смешивают в сухой посуде 100 г амидопирина и 1,0—1,5 г анилина солянокислого и затем заливают 95% этиловым спиртом до объема 1л. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.

Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте при +4°С (в холодильнике) 2 мес; в темноте при комнатной температуре (+18°, +23°С) — не более 1 мес. Умеренное пожелтение реактива без выпадения осадка в процессе хранения не снижает его рабочих качеств.

Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равнообъемные количества азопирама и 3% перекиси водорода.

Рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1—2 ч. При более длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше +25°С рабочий раствор розовеет быстрее, поэтому его рекомендуется использовать в течение 30—40 мин. Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать рабочий раствор на ярком свету или при повышенной температуре.

При постановке азопирамовой пробы в присутствии следов крови немедленно или не позже, чем через 1 мин появляется вначале фиолетовое, затем быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово-сиреневое или буроватое окрашивание реактива.

Азопирам кроме следов крови выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения, окислителей (хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды), а также ржавчины (окислов и солей железа) и кислот. При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и хлоросодержащих окислителей наблюдается буроватое окрашивание реактива, в остальных случаях окрашивание розово-сиреневое.

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют в случае необходимости так: 2—3 капли наносят на кровяное пятно. Если не позже, чем через 1 мин, появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневое, реактив пригоден к употреблению. Если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться нельзя.

4. Фенолфталеиновая проба: на вымытое изделие наносят 3 капли 1% спиртового раствора фенолфталеина. Появление розового окрашивания свидетельствует о присутствии остаточных количеств моющих средств.

Приложение 4.

Стерилизация растворами химических средств

Стерилизующее

средство

Режим стерилизации

Вид изделий, рекомендуемых к стери-

лизации данным методом

Условия проведе-

ния стерилизации

температура, С

Концентрация

Экспозиция,

мин.

1

2

3

4

5

6

Перекись водорода

(Россия)

не менее 18-50 (температура р-ра в момент погруже­ния, в процессе тем­пературу не поддер­живают)

6,0

6,0

360

180

Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, коррозионностойких металлов

Полное погруже­ние изделий в раствор (с заполнением каналов и

полостей) на время стерилизаци-онной выдержки

6

Полное погруже­ние изделий в раствор (с заполнением каналов и

полостей) на время стерилизаци-онной выдержки

Дезоксон-1,

Дезоксон-4 (Рос-

сия)

не менее 18

1,0

45

изделия из полимерных материалов

(резины на основе силиконового кау-

чука, пластмассы), стекла, коррози-он нестойких металлов

Первомур (Рос-

сия)

не менее 18

4,8

15

Лигатурный шовный материал (нити

хирургические шелковые крученые, нити хирургические капроновые кру-

ченые)

Бианол («НИО-

ПИК, Россия)

21

20,0

600

Изделия из полимерных материалов

(резины, пластмассы), стекла, метал­лов

Лизофор-

мин-3000 («Лизоформ Д-р Ханс

Лиземанн ГмбХ»,

Германия)

40—50 температура в

момент погружения,

в процессе стерилизации температура

не поддержи-вается

8,0

60

Изделия из полимерных материалов

(резины, пластика), стекла, металлов

КолдСпор («Мертекс Ке-серч Корпо­рейшн», США)

21

20,0

540

Изделия из полимерных материалов (резины, пластика), стекла, металлов

1

2

3

4

5

Глутарал, Глута-рал Н (Россия)

21

без раз­ведения

240 600

Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, корро-зионностойких металлов

Сайдекс («Джон­сон и Джонсон Медика Лтд», Великобритания)

21

без раз­ведения

240 600

Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, корро-зионностойких металлов

Стераниос 20% концентрирован­ный («Аниос», Франция)

21

2,0

300 360

Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, корро-зионностойких металлов

Дюльбак раство­римый («Пет-тенс-Фрас-Хи-мия», Франция)

21

без раз­ведения

240 360

Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, корро-зионностойких металлов

Гигасепт ФФ («Шульке и Ма-йер», Германия)

21

10,0

600

Изделия из полимерных материалов (резины, пластмассы), стекла, корро-зионностойких металлов

Примечание: концентрация растворов средств Бианол, Лизоформин-3000, КолдСпор, Гигасепт ФФ приведена по препа­рату, средства Первомур - по суммарному содержанию 30-33% перекиси водорода и 100% муравьиной кислоты, раство­ров остальных средств — по активно-действующему веществу. Допускается для проведения стерилизации использование только медицинской перекиси водорода.

Приложение 5.

Антисептики для обработки кожных покровов

Название антисептика

Фирма, страна производства

Гигиеническая дезинфекция рук

Хирургическая дезинфекция рук

Обработка

инъекционного поля

1

2

3

4

5

6

1.

Алинадерм

Алина, Австрия

+

-

+

2.

Алинаман

Алина, Австрия

+

+

-

3.

Асептинол (савикал)

Петтенс — Франс Химия, Франция

+

+

-

4.

Асептинол спрей

Петтенс - Франс Химия, Франция

+

+

-

5.

АХД-2000-специаль

АОЗТ Петроспирт, Россия, Лизоформ д-р Ганс Роземанн ГМБХ, Германия

+

+

+

6.

Биотензид Дезинфектант

Джонсон и Джонсон, США

+

-

-

7.

Гибитан 2,5% спиртовый раствор

Польша, Великобритания

+

+

+

8.

Дамисепт (дезинфицирую­щие салфетки)

ОАО Дами, Москва, Россия

+

-

-

9.

Дегмицид, 1% раствор

г. Новокузнецк, Россия

-

+

-

10.

Декосепт

Борер Хеми АГ, Швейцария

+

-

-

11.

Кутасепт Г

Боде Хеми Гмбх, Германия

-

-

+

12.

Кутасепт Ф

Боде Хеми Гмбх, Германия

+

+

+

13.

Манопронто

Мерк ГмбХ, Австрия, Джон­сон и Джонсон, США

+

-

-

14.

НД-410

Дюрр-Денталь-Орахим, Гер­мания

+

+

-

15.

Октенидерм

Шульке и Майер, Германия

+

+

+

16.

Октениман

Шульке и Майер, Германия

+

+

-

1

2

3

4

5

6

17.

Первомур (рецептура С-4)

готовят из муравьиной кисло­ты и перекиси водорода

-

+

-

18.

Пливасепт 5% концен­трат с ПАВ

Плива, Хорватия

-

+

+

19.

Пливасеп 5% концентрат без ПАВ

Плива, Хорватия

-

+

+

20.

Сагросепт

Шульке и Майер, Германия

+

-

-

21.

Софтаман

Б. Браун, Медикал ЛТД, Гер­мания

+

-

-

22.

Софтасепт Н окрашен­ный

Б. Браун Медикал ЛТД, Гер­мания

-

-

+

23.

Софтасепт Н неокрашен­ный

Б. Браун Медикал ЛТД, Гер­мания

+

-

+

24.

Спирт этиловый 70%

Россия

+

-

+

25.

Спитадерм

Хенкель-Эколаб АБ, Финлян­дия

+

+

+

26.

Стериллиум

Боде, Хеми ГмбХ и Ко, Герма­ния

+

+

-

27.

Триформин Д

Доктор Вайгерт, ГерманияМ

+

+

+

29.

Лизанин

АОЗТ Петроспирт, Россия, Лизоформ д-р Ганс Роземанн ГМБХ, Германия

+

+

-

30.

Лизанин ОП

АОЗТ Петроспирт, Россия, Лизоформ д-р Ганс Роземанн ГМБХ, Германия

-

-

+

Список литературы:

        1. Арутюнов С.Д., Царев В.Н., Остроухова А.А.. Основы применения современных методов стерилизации и дезинфекции в стоматологической практике. Учебное пособие. – М., 2003. – 74 с.

        2. Внутрибольничные инфекции в хирургической стоматологии. / В.С. Агапов, С.В. Тарасенко, Г.М. Трухина, А.М. Лакшин. – М.: Медицина, 2002. – 255 с.

        3. Дезинфекция. Дезинсекция. Дератизация: руководство для студентов медицинских вузов и врачей / В.В. Шкарин. – Н. Новгород. - 2006. – 580с.

        4. Катаева В.А. Профилактика внутрибольничных инфекций в стоматологических поликлиниках. Учеб. пособие для студентов стоматологического факультета. – М., 1989. – 20 с.

        5. Катаева В.А. Труд и здоровье врача-стоматолога. – М.: Медицина, 2002. – 208с.

        6. Организация санитарно-противоэпидемического, дезинфекционно-стерилизационного режимов и профилактика профессиональных заражений медицинского персонала в стоматологических поликлиниках (кабинетах). Практическое руководство. / Е.Б. Иванова, Э.М. Толмачева, А.А. Шапошников и др. – М.: Хризостом, 2001. – 104 с.

        7. Плазменная стерилизация стоматологического инструментария. Методические рекомендации для студентов, ординаторов стоматологических факультетов и врачей стоматологов/ С.Д. Арутюнов, В.Н. Царев, А.А. Остроухова и др. – М., ГОУ ВУНМЦ – 2001. – 22 с.

        8. Профилактика ВИЧ/СПИДа в стоматологической практике. Медицинские рекомендации. / И.М. Рабинович, А.А. Голиусов, К.Г. Гуревич, Е.Г. Фабрикант, Ю.В. Мартынов. – М., 2006. – 84 с.

        9. Санитарно-гигиенический режим, дезинфекция и стерилизация в стоматологических учреждениях. Учебное пособие./ А.А. Остроухова, С.Д. Арутюнов, В.Н. Царев и др. – М., 2006. – 51 с.

        10. Ющук Н.Д., Мартынов Ю.В. Эпидемиология: Учеб. пособие. – М.: Медицина, 2003. – 448с.

64

studfiles.net

2.1.1. Контроль качества предстерилизационной очистки

Проводится после завершающего этапа предстерилизационной очистки – подсушивания инструментов. Выполняют пробы на наличие остатков крови и моющих средств на инструментах, шприцах, иглах и пр.

Для выявления остатков крови проводят амидопириновую или азопирамовую пробы, а, если это невозможно, – бензидиновую или ортотолидиновую пробы.

Амидопириновая проба

Смешивают равные количества 0,5% спиртового раствора амидопирина, 30% уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода (по 2-3 мл).

На нестерильную вату наносят вышеказанный реактив. Через несколько секунд при отсутствии цветовой реакции на вате, этой ватой протирают инструменты или поршень щприца многоразового использования, цилиндр с наружной стороны, иглы, канюлю внутри. Затем заливают реактив в цилиндр шприца, пропускают его через шприц на другую вату (проверяется цилиндр шприца).

После этого закрепляют на шприце иглу, вновь наливают в цилиндр реактив и пропускают через шприц и иглу (проверяется игла).

Оценка результатов амидопириновой пробы

  • при наличии кровяных загрязнений на вате появляется сине-зеленое окрашивание; окрашивание может быть и при наличии на шприце, а также в игле, лекарственных средств и хлорамина;

  • при положительных пробах повторный контроль инструмента проводят до получения трехкратного отрицательного результата.

(Из методических рекомендаций по предстерилизационной очистке изделий медицинского назначения № 28 – 6/13 от 08.06.82 г).

Азопирамовая проба

Готовят в аптеке 1% или 1,5% раствор солянокислого анилина в 95% этиловом спирте. Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте (в холодильнике) 2 месяца, в комнате при температуре + 18-23 С не более одного месяца. Умеренное пожелтение реактива, наступающее в процессе хранения, без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств. Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные по объему количества азопирама и 3% перекиси водорода. Рабочий раствор должен быть использован в течение 1-2 часов. При более длительном хранении может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре +25С. раствор розовеет быстрее. Поэтому его наиболее целесообразно использовать в течение 30-40 минут после приготовления. Из-за изменения окраски раствора в условиях высокой температуры нельзя держать его на ярком свете, вблизи отопительных приборов, наносить на горячие инструменты.

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют при необходимости путем нанесения 2-3 его капель на кровяное пятно. Если не позднее чем через 1 мин. появляется фиолетовое окрашивание, переходящее в сиреневый цвет – реактив пригоден к применению. Если окрашивание в течение 1 минуты не появляется – реактивом пользоваться нельзя.

(Выписка из инструктивно-методических рекомендаций по контролю качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения с помощью реактива азопирам № 28-6/13 от 26.05.86 г.).

Бензидиновая проба

Не позднее чем за 2 часа до проведения пробы готовят реактив. В мезурку помещают несколько кристаллов бензидина, 2-3 мл 50% уксусной и кислоты столько же 2% раствора перекиси водорода.

Ортолидиновая проба

Состав реактива: 2-3 мл 50% уксусной кислоты, 0,25 г ортолидина и 2-3 мл 3% перекиси водорода.

Оценка результатов проведения проб на наличие остатков крови на изделиях

Контролируемые изделия должны быть сухими, иметь комнатную температуру. При постановке проб на контролируемые изделия наносят по 1 капле реактива. При наличии внутренних каналов реактив пропускают через них. Оценка проб проводится не позднее чем через 1 минуту. При наличии на изделии остатков крови во время проведения амидопириновой пробы появляется сине-зеленое окрашивание, при азопирамовой пробе – сначала фиолетовое, затем розово-сиреневое. При положительной реакции на наличие остатков крови все этапы предстерилизационной очистки необходимо повторить до получения отрицательного результата.

Определение остатков моющих средств на изделии фенолфталеиновой пробой

Готовят 1% спиртовый раствор фенолфталеина. Наносят на контролируемое изделие 1-2 капли раствора. При наличии внутренних каналов у изделий, пропускают реактив через эти каналы. Контролируемое изделие должно быть сухим и иметь комнатную температуру. Оценка результатов пробы проводится не позднее чем через 1 минуту. При наличии остаточного количества моющего средства появляется розовое окрашивание. В этом случае изделие промывают под проточной водой, а затем в дистиллированной воде до получения отрицательного результата. При использовании моющего средства "Биолот" проба с фенолфталеином не проводится.

(Из методических рекомендаций по контролю качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения № 28-6/13 от 08.06.82 г).

Общие требования к оценки качества предстерилизационной очистки

  • качественный контроль на остаточное количество крови и моющих средств проводится только после предстерилизационной очистки, проведенной в полном объеме;

  • котролируемые изделия должны быть сухими и иметь комнатную температуру;

  • оценка проб проводится не позднее 1 минуты после нанесения реактива на изделие;

  • контролю качества предстерилизационной очистки подлежит 1% каждого вида изделий, обрабатываемых одновременно, но не менее 3-5 единиц;

  • при выявлении положительной пробы на повторную обработку отправляется вся партия изделий, от которых отбирался контроль, до получения отрицательных результатов;

  • контроль качества предстерилизационной очистки проводят в отделении ежедневно, старшей сестрой отделения – не реже 1 раза в неделю, сотрудниками санитарно-эпидемиологических и дезинфекционных станций – не реже 1 раза в квартал;

  • сведения о результатах контроля заносят в специальный журнал (Из приказа МЗ СССР № 408 от 12.07.89 г.).

Предстерилизационная очистка завершается комплектованием (упаковкой) медицинских изделий.

studfiles.net

4. Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения.

4.1. Контроль качества ПСО проводят специалисты территориальных санитарно-эпидемиологических учреждений в зависимости от эпидзначимости медучреждений и конкретной эпидситуации.

Самоконтроль в лечебном учреждении проводят: в централизованных стерилизационных (ЦС) ежедневно, в отделениях – не реже 1 раза в неделю; организует и контролирует его старшая медицинская сестра (акушерка) отделения, главная медсестра – 1 раз в месяц.

4.2. Контролю подлежит: в ЦС – 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену, в отделениях – 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее 3 единиц.

4.3. Качество ПСО изделий оценивают путем постановки азопирамовой пробы (на наличие остаточных количеств крови).

Методика приготовления реактивов для постановки пробы

4.3.1. Азопирамовая проба.

4.3.1.1. Приготовление исходного раствора. Для приготовления 1 л (дм3) исходного раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина и 1,0-1,5 г солянокислого анилина, смешивают их в сухой мерной посуде и доводят до объема 1 л (дм3) 95% этиловым спиртом. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.

Исходный раствор азопирама следует хранить в плотно закрытом флаконе в темноте. Допустимый срок хранения исходного раствора азопирама составляет: при температуре 4оС (в холодильнике) – 2 месяца; при комнатной температуре (20оС) – не более 1 месяца. Умеренное пожелтение исходного раствора без выпадения осадка в процессе хранения не снижает рабочих свойств раствора.

4.3.1.2. Приготовление реактива азопирама. Перед постановкой пробы готовят реактив азопирам, смешивая равные объемные количества исходного раствора азопирама и 3% раствора перекиси водорода.

Реактив азопирама можно хранить не более 2 часов. При длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше +25оС раствор розовеет быстрее, поэтому его необходимо использовать в течение 30-40 мин. Не следует подвергать проверке горячие инструменты, а также хранить реактив азопирам на ярком свету и вблизи нагревательных приборов.

В случае необходимости пригодность реактива азопирам проверяют следующим образом: 2-3- капли реактива наносят на пятно крови. Если не позже, чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, преходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению; если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться не следует.

Методика постановки пробы

Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом, или наносят 2-3 капли реактива на изделие с помощью пипетки.

В шприцы вносят 3-4- капли рабочего раствора реактива и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь; реактив оставляют в шприце на 1 мин, а затем вытесняют на марлевую салфетку. При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц. Последовательно меняя иглы, через них пропускают реактив, вытесняя 3-4 капли на марлевую салфетку.

Качество очистки катетеров и других полых изделий оценивают путем введения реактива внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия на 1 мин, после чего сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от его величины.

studfiles.net

2.1.1. Контроль качества предстерилизационной очистки

Проводится после завершающего этапа предстерилизационной очистки – подсушивания инструментов. Выполняют пробы на наличие остатков крови и моющих средств на инструментах, шприцах, иглах и пр.

Для выявления остатков крови проводят амидопириновую или азопирамовую пробы, а, если это невозможно, – бензидиновую или ортотолидиновую пробы.

Амидопириновая проба

Смешивают равные количества 0,5% спиртового раствора амидопирина, 30% уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода (по 2-3 мл).

На нестерильную вату наносят вышеказанный реактив. Через несколько секунд при отсутствии цветовой реакции на вате, этой ватой протирают инструменты или поршень щприца многоразового использования, цилиндр с наружной стороны, иглы, канюлю внутри. Затем заливают реактив в цилиндр шприца, пропускают его через шприц на другую вату (проверяется цилиндр шприца).

После этого закрепляют на шприце иглу, вновь наливают в цилиндр реактив и пропускают через шприц и иглу (проверяется игла).

Оценка результатов амидопириновой пробы

  • при наличии кровяных загрязнений на вате появляется сине-зеленое окрашивание; окрашивание может быть и при наличии на шприце, а также в игле, лекарственных средств и хлорамина;

  • при положительных пробах повторный контроль инструмента проводят до получения трехкратного отрицательного результата.

(Из методических рекомендаций по предстерилизационной очистке изделий медицинского назначения № 28 – 6/13 от 08.06.82 г).

Азопирамовая проба

Готовят в аптеке 1% или 1,5% раствор солянокислого анилина в 95% этиловом спирте. Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте (в холодильнике) 2 месяца, в комнате при температуре + 18-23 С не более одного месяца. Умеренное пожелтение реактива, наступающее в процессе хранения, без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств. Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные по объему количества азопирама и 3% перекиси водорода. Рабочий раствор должен быть использован в течение 1-2 часов. При более длительном хранении может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре +25С. раствор розовеет быстрее. Поэтому его наиболее целесообразно использовать в течение 30-40 минут после приготовления. Из-за изменения окраски раствора в условиях высокой температуры нельзя держать его на ярком свете, вблизи отопительных приборов, наносить на горячие инструменты.

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют при необходимости путем нанесения 2-3 его капель на кровяное пятно. Если не позднее чем через 1 мин. появляется фиолетовое окрашивание, переходящее в сиреневый цвет – реактив пригоден к применению. Если окрашивание в течение 1 минуты не появляется – реактивом пользоваться нельзя.

(Выписка из инструктивно-методических рекомендаций по контролю качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения с помощью реактива азопирам № 28-6/13 от 26.05.86 г.).

Бензидиновая проба

Не позднее чем за 2 часа до проведения пробы готовят реактив. В мезурку помещают несколько кристаллов бензидина, 2-3 мл 50% уксусной и кислоты столько же 2% раствора перекиси водорода.

Ортолидиновая проба

Состав реактива: 2-3 мл 50% уксусной кислоты, 0,25 г ортолидина и 2-3 мл 3% перекиси водорода.

Оценка результатов проведения проб на наличие остатков крови на изделиях

Контролируемые изделия должны быть сухими, иметь комнатную температуру. При постановке проб на контролируемые изделия наносят по 1 капле реактива. При наличии внутренних каналов реактив пропускают через них. Оценка проб проводится не позднее чем через 1 минуту. При наличии на изделии остатков крови во время проведения амидопириновой пробы появляется сине-зеленое окрашивание, при азопирамовой пробе – сначала фиолетовое, затем розово-сиреневое. При положительной реакции на наличие остатков крови все этапы предстерилизационной очистки необходимо повторить до получения отрицательного результата.

Определение остатков моющих средств на изделии фенолфталеиновой пробой

Готовят 1% спиртовый раствор фенолфталеина. Наносят на контролируемое изделие 1-2 капли раствора. При наличии внутренних каналов у изделий, пропускают реактив через эти каналы. Контролируемое изделие должно быть сухим и иметь комнатную температуру. Оценка результатов пробы проводится не позднее чем через 1 минуту. При наличии остаточного количества моющего средства появляется розовое окрашивание. В этом случае изделие промывают под проточной водой, а затем в дистиллированной воде до получения отрицательного результата. При использовании моющего средства "Биолот" проба с фенолфталеином не проводится.

(Из методических рекомендаций по контролю качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения № 28-6/13 от 08.06.82 г).

Общие требования к оценки качества предстерилизационной очистки

  • качественный контроль на остаточное количество крови и моющих средств проводится только после предстерилизационной очистки, проведенной в полном объеме;

  • котролируемые изделия должны быть сухими и иметь комнатную температуру;

  • оценка проб проводится не позднее 1 минуты после нанесения реактива на изделие;

  • контролю качества предстерилизационной очистки подлежит 1% каждого вида изделий, обрабатываемых одновременно, но не менее 3-5 единиц;

  • при выявлении положительной пробы на повторную обработку отправляется вся партия изделий, от которых отбирался контроль, до получения отрицательных результатов;

  • контроль качества предстерилизационной очистки проводят в отделении ежедневно, старшей сестрой отделения – не реже 1 раза в неделю, сотрудниками санитарно-эпидемиологических и дезинфекционных станций – не реже 1 раза в квартал;

  • сведения о результатах контроля заносят в специальный журнал (Из приказа МЗ СССР № 408 от 12.07.89 г.).

Предстерилизационная очистка завершается комплектованием (упаковкой) медицинских изделий.

studfiles.net

Вопрос 5. Контроль качества предстерилизационной очистки. Пробы на качество предстерилизационной очистки

Контроль качества предстерилизационной очистки в ЦСО организует и проводит старшая медицинская сестра (акушерка) отделения, а в подразделениях и кабинетах – старшие медицинские сестры этих подразделений.

Основным методом контроля качества предстерилизационной очистки являются:

§ азопирамовая проба;

§ фенолфталеиновая проба.

Контролю подлежат:

§ в ЦСО – 1% от каждого наименования изделий, обрабатываемых за смену;

§ в отделениях и кабинетах – 1% одновременно обрабатываемых изделий каждого наименования, но не менее трёх единиц.

Результаты контроля отражают в специальном журнале (форма № 366/у). При положительной пробе всю группу изделий, из которой отбирали контроль, подвергают повторной очистке до получения отрицательных результатов.

Азопирамовая проба

Проба на качество очистки от крови, лекарственных препаратов, моющих средств, хлорсодержащих веществ, ржавчины.

Раствор азопирама (1литр) содержит:

§ амидопирин 10 % - 100 г;

§ соляно-кислый анилин 1 г;

§ этиловый спирт 95 0 до 1 литра.

Данный раствор может храниться в холодильнике 2 месяца, а при комнатной температуре – не более 1 месяца.

Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные объёмы азопирама и 3% перекиси водорода. На поверхность инструментов наносят 1 – 2 капли. Для проверки изделий, имеющих каналы, реактив пропускают через них с помощью шприца. Реактив оставляют внутри изделия на 1 мин, после чего сливают на марлевую салфетку. Через 1 мин оценивают результаты контроля. При положительной пробе при наличии следов крови немедленно или не позднее чем через 1 мин на тампоне (салфетке) появляется фиолетовое окрашивание,которое в течение нескольких секунд переходит в розово-сиреневое.

В случае положительной пробы (изменение цвета реактива) вся группа контролируемых изделий подвергается повторной очистке.

Особенности реакции:

§ окрашивание, наступившее позднее, чем через одну минуту, не учитывают;

§ исследуемые предметы должны иметь комнатную температуру;

§ рабочий раствор азопирама следует использовать в течение 1 – 2 часов;

§ при наличии на исследуемых предметах ржавчины появится бурое окрашивание; при наличии хлорсодержащих окислителей – фиолетовое; при наличии остатков моющих средств – розовое.

 

Фенолфталеиновая проба

Проба на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств (только в случаях применения средств, рабочие растворы которых имеют рН более 8,5).

В качестве реактива используется 1% спиртовой раствор фенолфталеина. Раствор наносят на исследуемые поверхности как описано выше и оставляют на 1 минуту. Затем раствор вытесняют на марлевую салфетку. При положительной пробе о наличии на изделиях остаточных количеств моющего средства свидетельствует появление розового окрашивания реактива.

При положительной пробе проводят повторную предстерилизационную обработку всего инструмента, начиная с этапа промывания проточной водой.

Вопрос 6. Выводы

Изделий медицинского назначения многократного применения подвергают дезинфекции, предстерилизационной очистке и только после этого – стерилизации.

Предстерилизационную очистку изделий осуществляют после дезинфекции или при совмещении с дезинфекцией в одном процессе (в зависимости от применяемого средства): ручным или механизированным способами с целью удаления белковых, жировых, механических и химических загрязнений.

Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки азопирамовой пробы на наличие остаточных количеств крови, а также путем постановки фенолфталеиновой пробы на наличие остаточных количеств щелочных компонентов моющих средств (только в случаях применения средств, рабочие растворы которых имеют рН более 8,5).

Ненадлежащая, некачественная очистка инструментов после их использования в значительной степени снижает эффективность стерилизации.

 

МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ ХАБАРОВСКОГО КРАЯ

КРАЕВОЕ государственное БЮДЖЕТНОЕ образовательное учреждение

СРЕДНЕГО ПРОФЕССИОНАЛЬНОГО ОБРАЗОВАНИЯ

«Хабаровский государственный медицинский колледж»

 

Цмк «основЫ сестринского дела»

 

Т.В. КУКУШКИНА

 

 

СТЕРИЛИЗАЦИЯ: ПОНЯТИЕ, МЕТОДЫ И РЕЖИМЫ

Методическая разработка ЛЕКЦИОННого занятия

 

 

ПМ 04. ВЫПОЛНЕНИЕ РАБОТ ПО ПРОФЕССИИ «МЛАДШАЯ МЕДИЦИНСКАЯ СЕСТРА ПО УХОДУ ЗА БОЛЬНЫМИ» (РЕШЕНИЕ ПРОБЛЕМ ПАЦИЕНТА ПОСРЕДСТВОМ СЕСТРИНСКОГОУХОДА)

cyberpedia.su

Оценка качества предстерилизационной очистки — МегаЛекции

Самоконтроль качества предстерилизационной очистки в отделениях лечебно-профилактических учреждений проводится ежедневно.

Организуется и контролируется старшей медсестрой не реже 1 раза в неделю.

В ЦСО (центральное стерилизационное отделение) - ежедневно!Контролю подвергается 1% от одновременно отработанных изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц.

Контроль качества предстерилизационной очистки

Качество предстерилизационной очистки контролируют, определяя:- кровь - с помощью азопирамивой пробы;- масляные лекарственные загрязнения - с помощью пробы с суданом - 3;- остатки моющих средств — с помощью фенолфталеиновой пробы.

1. Азопирамовая проба

На 1 л раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина и 1 - 1,5 г солянокислого анилина. Вещества смешивают в сухой посуде и заливают 95% этиловым спиртом до объема 1,0 л. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.

Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе в темноте при +4°С (в холодильнике) 2 месяца; в темноте при комнатной температуре (+18-23°С) - не более 1 месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств.

Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные объемные количества азопирама и 3% перекиси водорода.

Рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1-2 часов. При более длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше +25°С рабочий раствор розовеет быстрее, поэтому его рекомендуется использовать в течение 30-40 мин. Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать рабочий раствор на ярком свету или при повышенной температуре (вблизи нагревательных приборов и т.д.).

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют путем нанесения 2-3 капель на кровяное пятно. Если не позже, чем через 1 мин, появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к использованию; если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться нельзя.

 

2. Амидопириновая проба

Смешивают равные количества 5% спиртового раствора амидопирина, 30% раствора уксусной кислоты и 3% раствора перекиси водорода.

Реактив готовят перед использованием.

5% спиртовый раствор амидопирина готовят на 95% этиловом спирте. Данный раствор может храниться во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение 1 месяца.

30% раствор уксусной кислоты и 3% раствор перекиси водорода готовят на дистиллированной воде.

 

3. Фенолфталеиновая проба

Готовят 1% раствор спиртовый фенолфталеина. Спиртовый раствор фенолфталеина может храниться во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение 1 месяца.

 

Методика постановки проб

Контролируемое изделие протирают тампоном, смоченным реактивом, или 2-3 капли реактива пипеткой наносят на изделие.

В шприц вносят 3-4 капли рабочего раствора и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь; реактив в шприце оставляют на 0,5-1,0 мин, после чего вытесняют на марлевую салфетку.

При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц, и последовательно меняя иглы, пропускают реактив через них, выдавливая на марлевую салфетку 3-4 капли.

При проверке качества очистки катетеров и других полых изделий реактив вводят внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия в течение 0,5–1,0 мин, после чего его сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от величины изделия.

При постановке азопирамовой пробы в присутствии следов крови немедленно или не позже, чем через 1 минуту появляется вначале фиолетовое, затем быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово-сиреневое или буроватое окрашивание реактива. Азопирам, кроме следов крови, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения (растительных остатков), окислителей (хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды и др.), а также ржавчины (окислов и солей железа) и кислот. При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и хлорсодержащих окислителей наблюдается буроватое окрашивание реактива; в остальных случаях окрашивание розово-сиреневое.

При постановке амидопириновой пробы о наличии на изделиях остаточных количеств крови свидетельствует немедленное или не позже, чем через 1 минуту после контакта реактива с кровью, появление сине-фиолетового окрашивания реактива различной интенсивности.

При постановке проб (азопирамовой, амидопириновой) окрашивание реактивов, наступившее позже, чем через 1 мин после постановки пробы, не учитывается.

При постановке фенолфталеиновой пробы о наличии на изделиях остаточных количеств щелочных компонентов моющего средства свидетельству появление розового окрашивания реактива.

 

 

4. Проба с суданом III

Пробу с суданом III используют для определения жировых загрязнений на шприцах и других изделиях, связанных с этими загрязнениями.

В 70 мл нагретого до 60°С (на водяной бане) 95% этилового спирта растворяют по 0,2 г измельченной краски судана III и метиленового синего. Затем добавляют 10 мл 20-25% раствора аммиака и 20 мл дистиллированной воды.

Данный раствор может храниться в плотно закрытом флаконе (в холодильнике) 6 месяцев.

При проверке качество очистки шприцев от жировых загрязнений, вовнутрь его вносят 3-5 мл реактива, смачивая им всю внутреннюю поверхность.

Через 10 с краску смывают обильной струей воды. Желтые пятна и потеки указывают на наличие жировых загрязнений.

При положительной пробе на кровь, моющее средство всю группу контролируемых изделий, от которой отбирался контроль, подвергают повторной обработке до получения отрицательных результатов.

 

 

Этап

Стерилизация

Все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью или инъекционными препаратами, а также изделия, которые соприкасаются со слизистой оболочкой и могут вызвать ее повреждения, после предстерилизационной очистки подвергаются стерилизации. Стерилизация обеспечивает гибель в стерилизуемых изделиях вегетативных и споровых форм патогенных и непатогенных микроорганизмов.

 

Стерилизацию проводят различными методами:

а) паровым;

б) воздушным;

в) химическим;

г) в промышленных условиях используют радиа-

ционный метод (гамма-излучения).

 

Выбор того или иного метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемого изделия.

Паровой метод применяется в 2 режимах: 1 - температура 132°С при давлении 0,2 МПа - 20 мин; 2 - температура 120°С при давлении 0,11 МПа.

Паровым методом стерилизуют хирургические инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозионностойких металлов, стеклянную посуду, шприцы с надписью 200°С, белье, перевязочный материал, изделия из резины (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т.д.), латекса, отдельных полимерных материалов.

Хирургическое белье, перевязочный материал укладывают в стерилизационные коробки параллельно движению пара.

Резиновые перчатки перед стерилизацией внутри и снаружи пересыпают тальком для предохранения их от склеивания. Между перчатками прокладывают марлю или бумагу, каждую пару перчаток завертывают отдельно в двойную бязь, пергамент или бумагу и в таком виде помещают в стерилизационную коробку или в другую упаковку. В целях уменьшения неблагоприятного воздействия пара резиновые перчатки стерилизуют при температуре пара 120°С.

Стерилизацию проводят в стерилизационных коробках (биксах) без фильтров или с фильтром или в двойной мягкой упаковке из бязи, пергамента, бумаге мешочной непропитанной, бумаге мешочной влагопрочной, бумаге для упаковки продуктов на автоматах марки Е, бумаге упаковочной, высокопрочной, бумаге двухслойной крепированной.

Срок хранения изделий, простерилизованных в коробках с фильтром, равен 20 суткам, в любой другой упаковке - 3 суткам, если не нарушена целостность упаковки. При положительных сторонах паровой метод имеет и существенные недостатки: вызывает коррозию инструментов из коррозионно-стойких металлов; превращаясь в конденсат, увлажняет стерилизуемые изделия, что ухудшает условия хранения, увеличивая опасность повторного обсеменения изделий микроорганизмами.

 

Воздушный метод стерилизации.

Стерилизующим агентом воздушного метода стерилизации является сухой горячий воздух. Этот метод лишен ряда недостатков парового метода. Однако сухой воздух прогревает стерилизуемые изделия медленно и неравномерно, необходимо механически побуж-дать его движение. По эффективности воздействия на микроорганизмы он уступает пару, и для обеспечения стерилизации требуются более высокие температуры. Это сокращает номенклатуру изделий, которые могут быть простерилизованы данным методом: исключаются изделия из резин, полимеров, ограничивается также перечень упаковочных материалов - не следует использовать пергамент, ткани.

Стерилизацию воздушным методом в воздушных стерилизаторах при температуре 160 и 180°С, время экспозиционной выдержки равно 150 и 60 мин соответственно.

Воздушным методом стерилизуют изделия из металлов, стекла, силиконовой резины: хирургические и др. инструменты, инъекционные иглы, шприцы с пометкой “200°С”; стеклянные пипетки, капилляры, меланжеры; трубки и др. изделия из силиконовой резины. Иглы для акупунктуры, гортанные зеркала, зубные боры следует стерилизовать при температуре 160°С. Для уменьшения коррозийного воздействия стерилизации подвергают сухие изделия.

Для упаковки изделий, стерилизуемых воздушным методом, применяют те же оберточные бумаги, за исключением пергамента и мешочной непропитанной.

Исключается мягкая бязевая упаковка. Срок хранения упакованных изделий 3 суток без нарушения целостности упаковки. Можно также стерилизовать предметы без упаковки в открытых, обязательно решетчатых емкостях. Нельзя в чашках Петри, крышках стерилизаторов. После стерилизации они хранятся на стерильно накрытых столиках в асептических условиях не более 6 часов. Затем они подлежат повторной стерилизации.

Перед стерилизацией воздушным методом изделия после предстерилизационной очистки высушивают в сушильном шкафу при температуре 85 (+2–10)°С до исчезновения видимой влаги. Высушивание металлических изделий проводят немедленно после извлечения из влажной среды.

Эффективность воздушной стерилизации зависит от равномерного распределения горячего воздуха в стерилизационной камере, что достигается правильной загрузкой стерилизатора. Изделия, подлежащие стерилизации, загружаются в таком количестве, которое допускает свободную подачу воздуха к стерилизуемому предмету. Стерилизуемые изделия необходимо укладывать горизонтально поперек пазов кассет, полок, равномерно их распределяя. Недопустима загрузка стерилизатора навалом. Не допускается перекрывать продувочные окна и решетку вентиляции. Большие предметы следует класть на верхнюю металлическую решетку, чтобы они не препятствовали потоку горячего воздуха. Шприцы стерилизуют в разобранном виде.

Во время стерилизации воздушным методом металлических инструментов без упаковки их располагают так, чтобы они не касались друг друга. Должен быть налажен учет сроков хранения стерильных изделий. Для этого должны фиксироваться дата и время стерилизации (должны быть бирочки на биксах, столах, журналы).

В последнее время, в связи с развитием современных медицинских технологий и широким внедрением в практику здравоохранения высокоточных инструментов и сложного дорогостоящего оборудования, возникла насущная необходимость в щадящих низкотемпературных методах стерилизации.

 

Низкотемпературные методы стерилизации.

В мировой практике встречаются 3 основных метода низкотемпературной стерилизации: газовый этиленоксидный, газовый формальдегидный и плазменный.

1. Газовая стерилизация при помощи этилен оксида.

Наиболее широко в мире применяется стерилизация с помощью этилен оксида. Для сравнения, в 1999г. в США 52,2% всех одноразовых медицинских изделий было простерилизовано с помощью этилен-оксида, 45,5% - гамма-радиацией, 1,8% - паровым методом и только 0,5% - другими методами стерилизации.

2. Газовая стерилизация при помощи формальдегида.

Газовая стерилизация на основе формальдегида нашла широкое применение в качестве дезинфекции высокого уровня для камерной дезинфекции.

Кроме того, в связи с низкой проникающей способностью формальдегида, данный метод требует применения рабочей температуры в пределах 65 – 80°С, что ставит под сомнение позиционирование данного метода в качестве действительно низкотемпературного. Для формальдегида имеются существенные ограничения в отношении стерилизации полых многоканальных изделий, изделий с отверстиями и каналами. Для формальдегида не разработано нейтрализаторов отработанных газов и полного мониторинга процесса стерилизации. Капитальные затраты на оснащение формальдегидным стерилизатором в два раза превосходят затраты на этилен оксидный стерилизатор.

 

3. Плазменный метод, действующим началом которого являются пары перекиси водорода, в настоящее время находится в стадии становления и, возможно, со временем получит определенное распространение в учреждениях здравоохранения. Отсутствуют общепризнанные международные стандарты для данного метода. Ограничения в отношении стерилизации материалов, содержащих целлюлозу и каучук, а также высокая стоимость оборудования и расходных материалов сужают спектр применения данного метода стерилизации. Кроме того, ограничения в отношении стерилизации полых многоканальных изделий требуют применения дополнительных расходных приспособлений, еще более увеличивающих стоимость цикла стерилизации. В результате, использование плазменного метода наиболее приемлемо для стерилизации уникальных термолабильных изделий, имеющихся в единичном экземпляре и используемых неоднократно в течение рабочего дня.

Организация стерилизации

К сегодняшнему дню в России сложилось несколько форм организации стерилизации: децентрализованная, централизованная (осуществляемая в ЦСО) и смешанная.

Децентрализованная стерилизация имеет ряд существенных недостатков, оказывающих влияние на ее эффективность. Предстерилизационная обработка изделий проводится вручную в приспособленных помещениях и необорудованных для этой цели рабочих местах. При этом качество предстерилизационной очистки, разумеется, оказывается низким. Стерилизация изделий осуществляется в различных корпусах (отделениях) больницы и выполняется, как правило, необученным персоналом. Часто не соблюдаются технология проведения стерилизации, правила упаковки и загрузки изделий. Нередки случаи использования неисправного оборудования, так как контроль за эффективностью его работы в условиях децентрализованной стерилизации затруднен.

Централизованная стерилизация лишена этих недостатков. Данными по бактериологическому контролю эффективности стерилизации доказано, что число случаев неудовлетворительной стерилизации в больницах, где организованы ЦСО, примерно в 3 раза меньше, чем в ЛПУ без централизованной стерилизационной. Отмечается снижение в несколько раз количества послеоперационных гнойных осложнений после организации ЦСО. Кроме того, ЦСО улучшает и облегчает работу врачей и среднего медицинского персонала других отделений.

Современное центральное стерилизационное отделение должно иметь 3 зоны: "грязную", "чистую" и "стерильную".

"Грязная" зона - это помещения, в которых находится использованный инструментарий и материалы; представлены комнатой для приема материала в контейнерах из отделений и двумя моечными помещениями - одно для непосредственно инструментов и материалов, а другое - для транспортных тележек, на которых осуществляется перевозка контейнеров по лечебному учреждению. "Грязная" зона сообщается с "чистой" только через моечные автоматы проходного типа и посредством закрывающегося передаточного окна (для передачи инструментов, вымытых, продезинфицированных и высушенных вручную). В состав "грязной" зоны целесообразно включить гардероб для верхней одежды и санузлы общего пользования.

"Чистая" зона - это те помещения, что расположены непосредственно за мойками. Там находятся инструменты и материалы уже чистые, но еще не стерильные. К этим помещениям относятся комнаты упаковки и подготовки к стерилизации инструментов, подготовки и упаковки текстиля, изготовления перевязочных материалов, различные складские помещения и комнаты для персонала, одетого в спецодежду (халаты, головные уборы, специальная обувь). Вход в "чистую" зону осуществляется через санпропускник.

"Стерильная" зона - это, собственно, склад простерилизованного материала. Он отделен от "чистой" зоны проходными стерилизаторами. Это помещение особой чистоты, куда вход разрешен только через санпропускник, строго ограниченному персоналу, в специальной одежде, к примеру, обязательно в масках.

Предусматриваются также служебные помещения, изолированные от функциональных. Это коридоры, канцелярия, комната персонала, не одетого в спецодежду, комната подготовки воды и др.

 

megalektsii.ru